Vazyme Mouse Naive CD4+ T Cell Isolation Kit
诺唯赞 小鼠Naive CD4+ T细胞分选试剂盒
磁分细选,纯净无杂
产品应用
小鼠脾脏/淋巴结 Naive CD4+ T细胞分离纯化
产品简介
Mouse Naive CD4+ T Cell Isolation Kit通过阴选方法从小鼠脾脏、淋巴结等组织单细胞悬液中分离出Naive CD4+ T细胞。其原理是使用Biotin标记的单克隆抗体对非目的细胞进行标记,利用链霉亲和素磁珠去除非目的细胞,从而达到Naive CD4+ T细胞分选的目的。本产品18 min左右即可获得目的细胞,分选后细胞无异常激活,不影响下游实验。分离过程需搭配磁极或磁力架使用。

图1. Naive CD4+ T细胞分选操作流程
产品优势
纯度高:分选细胞的纯度可高达90% - 96%
活性好:阴性选择,磁珠不与细胞直接接触
速度快:无需分离柱,18 min即可获得目的细胞
无刺激:分选后细胞无异常激活,不影响下游实验
性能展示
1. 分选纯度高

图2. 小鼠脾脏分选前后的Naive CD4+ T细胞纯度
使用 Vazyme 细胞分选试剂盒进行阴性选择获得的Naive CD4+ T目的细胞有较高的纯度(图2)。
2. 细胞活性高,样本兼容广

图3. 分选后Naive CD4+ T细胞活性检测(a)、得率检测(b)以及纯度检测(c)
不同样本分选结果表明:小鼠Naive CD4+ T细胞分选试剂盒(Vazyme #CS105)可以兼容淋巴结、脾脏及其混合样本中 Naive CD4+ T细胞的分选,分选后 Naive CD4+ T细胞活性可达到90% - 96%(图3a)、得率良好(图3b),纯度90% - 96%(图3c)。
组分&说明

保存条件
2 ~ 8℃保存,冰袋运输。不可冷冻。
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Q1:分选纯度低
A1:
(1)死细胞过多。制备单细胞悬液时,应尽量轻轻研磨样本,避免细胞破损。可用台盼蓝染色判断细胞状态;
(2)流式检测通道存在问题,根据染色抗体对应的激发和发射波长选择相应的流式检测通道;
(3)初始细胞量或细胞浓度过高/低。本产品分选细胞数量为1 × 107 - 2 × 108 cells,进行分选前应使用细胞计数仪或流式细胞仪进行细胞数目测定。试验中细胞浓度应调整为(1 × 108 cells)/ml;
(4)产品组分未充分混匀。Isolation Cocktail 和 Streptavidin Beads添加后应充分吸打混匀,其中Streptavidin Beads组分容易沉降,可以每1 - 2 min应吸打混匀1次;
(5)抗体的使用量或孵育时间不足。应按照说明书推荐抗体使用量和时间进行冰上孵育;
(6)染色异常。建议使用说明书推荐的抗体染色,避光条件下,冰上孵育20 - 30 min或室温15 min。
Q2:分选得率低
A2:
(1)计算方式不恰当。得率=(分选后细胞数×分选后目的细胞纯度)/(分选前细胞数×分选前目的细胞纯度);
(2)Streptavidin Beads孵育时间过长。建议按照说明书推荐时间进行孵育。 Streptavidin Beads孵育时间过长可能会导致非特异性吸附;
(3)分选体积不恰当。按照分选建议的上样量,建议细胞浓度为1 × 108 cells/ml;
(4)细胞悬液含有细胞团块。磁珠分选之前应该过滤去除细胞团块;
(5)抗体或磁珠用量超过说明书建议用量。按照说明书推荐的抗体/磁珠用量进行分选。
(6)分选时间过长,造成死细胞过多。尽量在冰上操作,避免操作时间过长,分选buffer中需加入EDTA或者DNA酶来避免细胞的黏连;
Q3:分选活性低
A3:
(1)样本制备研磨过于剧烈。制备单细胞悬液时,使用针管的针栓横截面进行研磨,应尽量轻轻研磨样本,避免细胞破损,分选前可以使用台盼蓝染色,确定细胞活性;
(2)分选过程造成机械损伤。分选过程应尽量保持动作轻柔,避免造成过大的机械损伤;
(3)分选时间过长。制备单细胞悬液后,尽快进行细胞分选,时间越长,细胞死亡越多;
(4)分选温度过高。分选细胞收集后需贮藏在适当温度下,一般是保存在4℃或者冰上;
(5)细胞裂红体积过大或者时间过长。该试剂盒中含有标记红细胞的抗体,无需再进行红细胞裂解。
Q4:分选结果存在高背景或非特异染色
A4:
(1)荧光染料孵育时间过长。荧光染料孵育时间可参照说明书推荐的使用时间;
(2)分选buffer成分影响目的抗原。需检查分选buffer成分;
(3)含细胞粘连体或死细胞。在进行活细胞表面染色时,使用活细胞鉴定染料对死细胞设门;使用时确保细胞样本新鲜,细胞尽量都放在冰上操作;
(4)分选buffer不新鲜。使用的分选buffer,请确认分选buffer新鲜并且已经正确制备;
Q5:分选结果无染色或弱染色
A5:
(1)细胞群的设门不正确。对细胞群进行正确的设门;
(2)荧光染料淬灭。荧光抗体及荧光抗体染色后的样本需注意避光保存;
(3)荧光抗体过期或未按照正确温度条件贮藏。需确认抗体储存温度,保质期;
(4)染色细胞数量过多。可以调整细胞群至推荐的密度,如5 × 105 cells添加0.5 μl检测抗体,避光条件下,冰上孵育30 min或室温15 min。
(5)流式检测通道存在问题,根据染色抗体对应的激发和发射波长选择相应的流式检测通道;
Q6:分选后的 naive T 细胞表型如何确认?下游有哪些细胞应用
A6:
通过流式细胞术检测 CD4+/CD8+ CD62L+ CD44-以验证纯度;
naive CD4+ T 细胞:可用于 Th1/Th2/Th17 极化实验、Treg 诱导等;
naive CD8+ T 细胞:适用于 CTL 分化、肿瘤免疫研究等。
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